Влияние новых поверхностно-активных веществ на величину бактерицидной активности сыворотки крови цыплят

УДК 576.89
DOI 10.33861/2071-8020-2025-5-29-33

Оригинальное эмпирическое исследование

Святогорова А. Е., Зубенко А. А., Фетисов Л. Н., Яровая Н. А., Байрамова В.Н. Северо-Кавказский зональный научно исследовательский
ветеринарный институт – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения
«Федеральный Ростовский аграрный научный центр», Ростовская область, г. Новочеркасск

Аннотация. Известны факты усиления иммунного ответа и стимуляции показателей неспецифической резистентности животных и птицы при назначении им антибиотиков. В СКЗНИВИ в течение ряда лет ведутся работы по созданию новых антиинфекционных соединений неантибиотического происхождения. В качестве альтернативных антибиотикам средств предлагаются, в том числе, поверхностно-активные вещества: амиды жирных кислот (лауриновой, пальмитиновой, миристиновой, олеиновой, стеариновой и их производные) в виде солей с органическими и минеральными кислотами и производные эпоксидированного соевого масла. Экспериментом было предусмотрено введение препаратов двум опытным группам цыплят двумя циклами по 7 дней с перерывом между ними также длительностью в 7 дней. Проведённые исследования показали, что добавление ПАВ ряда амидов жирных кислот (водный раствор хлористоводородной соли 3-диметиламинопропиламида амида миристиновой кислоты) и производного эпоксидированного соевого масла в рацион повышает сохранность птицы и не оказывает отрицательного влияния на показатели роста. В период выпаивания растворов ПАВ 726 и ПАВ 29 общее состояние цыплят оценили как удовлетворительное, нарушения аппетита не отметили, дисфункции кишечника не наблюдали, общей токсической реакции не наблюдали, живая масса цыплят во всех группах была близка равной. Результаты исследований свидетельствует о положительном влиянии новых ПАВ на резистентность цыплят раннего возраста. Неспецифическая защита организма животных обеспечивается клеточными и гуморальными факторами. К числу гуморальных факторов, среди прочих, относится бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК). Определили, что БАСК цыплят опытных групп незначительно выше, чем в контрольных группах: при выпойке ПАВ 29 на 2,1%; при выпойке ПАВ 726 на 3,4%, что не является статистически достоверными (Р<0,95). Это означает, что новые ПАВ не оказывают существенного влияния на уровень бактерицидной активности сыворотки крови цыплят.

Ключевые слова: поверхностно-активные вещества, гидрохлорид амида миристиновой кислоты, эпоксидированное соевое масло, бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК), сохранность цыплят.

Устойчивость микроорганизмов к противомикробным препаратам стала серьёзной проблемой в животноводстве, что привело к запрету на использование субтерапевтических доз антибиотиков в кормах и необходимости поиска альтернативных стимуляторов роста. Исследования многочисленных авторов посвящены изысканию веществ, препаратов и способов для преодоления лекарственной устойчивости микроорганизмов и для повышения иммунобиологической реактивности птицы и животных.

Monika Pipova et all (2025) считают, что гуминовые вещества (далее, ГВ), природные кормовые добавки, образующие комплексы, снижают биодоступность противомикробных препаратов для микробиома кишечника, тем самым ограничивая возникновение и распространение устойчивости к противомикробным препаратам в пищевой цепочке. Однако эта гипотеза ещё не была должным образом проверена экспериментально. Работа посвящена выделению кишечной палочки (E. coli) из слепых отростков 80 цыплят-бройлеров, выращенных в течение 37 дней в контролируемых условиях. Цыплят контрольной и экспериментальной групп (по 40 бройлеров в каждой) кормили стандартным коммерческим кормом, но рацион экспериментальных цыплят постоянно дополняли гуминовыми веществами (99,3% корма + 0,7% ГВ). После убоя и потрошения в конце периода откорма содержимое кишечника всех цыплят подвергли микробиологическому анализу, направленному на подсчет, выделение и генотипическую идентификацию штаммов E. coli методом видоспецифической ПЦР. В общей сложности 58 штаммов E. coli от контрольных цыплят и 60 штаммов от цыплят, получавших корм с высоким содержанием белка, были протестированы на устойчивость к 19 противомикробным препаратам. Исследование показало, что ГВ в качестве кормовой добавки может эффективно снижать фенотипическую выраженность устойчивости E. сoli к противомикробным препаратам [23].

Chenglong Yu et all (2023) для профилактики кокцидиоза птицы применяли кокцидиостатики обычно с кормом и водой. Лимитирующим фактором такого способа профилактики является лекарственная устойчивость кокцидий. В связи с этим была разработана формула препарата на основе растений Agastache rugosus, Scutellaria barbata, Pericarpium citri reticulate и Radix glycyrrhizae. Её потенциал в лечении сложного клинического кокцидиоза был тщательно изучен на полевом изоляте Eimeria tenella, устойчивом к нескольким лекарственным препаратам. Птицам вводили 5 ? 104 спороцист и препарат давали с водой с 72-го часа после заражения до конца эксперимента. Диклазурил был выбран в качестве положительного контроля. Лечение продемонстрировало очевидный ингибирующий эффект на E. tenella.

Более того, добавление препарата восстанавливало численность и разнообразие микрофлоры кишечника, что было связано с модулирующим эффектом [19].

Куры являются одним из важнейших источников животного белка для населения, а также одним из важнейших резервуаров сальмонеллы для человека. В исследовании Marcela Faldynova et all (2025) протестировали добавление в корм смеси моноацилглицери-дов от C1 до C12. При добавлении 0,7 и 1,5 кг на тонну корма такая добавка значительно снижала количество сальмонелл в слепой кишке, но не в печени. Цыплята были заражены на 4-й день, а защитный эффект в слепой кишке наблюдался на 22-й и 23-й день жизни. Добавка также снизила воспалительную реакцию кур на сальмонел-лезную инфекцию, определяемую по экспрессии генов воспаления (маркёры) гликопротеида авидина, но не повлияла на экспрессию иммуноглобулинов в слепой кишке. Моноацилглицериды с длиной цепи от C1 до C12 можно использовать в качестве кормовой добавки, которая при постоянном добавлении в корм снижает количество сальмонелл у кур непосредственно перед убоем [22].

Целью исследования Salma E. Deeb et all (2024) было определить влияние порошка из листьев тимьяна в качестве натурального антиоксиданта и заменителя антибиотиков на скорость роста, характеристики тушки и показатели крови бройлеров. Результаты показали, что добавление препарата в количестве 2 или 3 г на 1 кг корма значительно увеличивало прирост массы тела, потребление корма и коэффициент конверсии корма на протяжении всего периода исследования. Кроме того, наблюдалось значительное снижение уровня креатинина и аланинаминотрансферазы. У птиц, получавших 2 г препаратов тимьяна на 1 кг корма, наблюдался самый высокий уровень альбумина и общего белка, а также соотношение альбумин/глобулин. Кроме того, у птиц, получавших 1 г на 1 кг корма, наблюдалась самая низкая концентрация липопротеинов низкой плотности и общего холестерина. У цыплят, получавших все виды корма, содержащего листья тимьяна, был самый высокий уровень иммуноглобулинов [26].

Mahmoud Arisha et all (2024) изучали потенциальное влияние добавления масла красного перца (КП) и рапсового масла (РМ) в рацион бройлеров на развитие птицы, работу иммунной системы и активность пищеварительных ферментов. Добавление КП и РМ в дозах 0,6 или 0,9 г/кг корма значительно улучшило показатели массы тела, потребления корма и коэффициента конверсии корма. Кроме того, в группе, получавшей КП и РМ в количестве 0,9 г/кг, наблюдался самый высокий уровень маркеров иммунной системы. Интересно, что у цыплят, получавших 0,9 г/кг КП и РМ, наблюдался самый низкий уровень кишечной палочки, сальмонеллы и колиформных бактерий. А также, наблюдалась тенденция к увеличению уровня молочнокислых бактерий при более высоких концентрациях КП и РМ. Авторы сделали вывод, что добавление КП и РМ в рацион бройлеров максимально повышает их продуктивность и иммунитет [21].

Пробиотики всё чаще используются для борьбы с патогенными бактериями. Tana He et all (2024) выделили штамм Ligilactobacillus salivarius XP132 из микробиоты кишечника здоровых кур. Этот штамм проявил устойчивость к низкому pH и солям желчных кислот, способность к аутоагрегации и к совместной агрегации с патогенной Salmonella. Результаты показали, что Ligilactobacillus salivarius XP132 обладает антибактериальной активностью широкого спектра, особенно сильной антибактериальной активностью против Salmonella. После перорального введения XP132 значительно повышалась выработка противоинфек-ционного цитокина IFN-? в сыворотке крови кур, что усиливало способность организма противостоять инфекции. Эти результаты свидетельствуют о том, что Ligilactobacillus salivarius XP132 обладает мощными антибактериальными и иммуномодулирующими свойствами, которые эффективно предотвращают как горизонтальную, так и вертикальную передачу Salmonella Pullorum, что подчёркивает его потенциал как ценного инструмента для профилактики и контроля заболеваний, вызванных Salmonella [27].

Pingping Zha et all (2022) рассматривают в качестве альтернативы антибиотикам для поддержания здоровья животных и улучшения общего производства, а также для обеспечения безопасности пищевых продуктов природный кристаллогидратированный магнийалюминий силикатный минерал с волокнистой морфологией палыгорскит (ПАЛ). Наличие микропор и каналов наряду с волокнистой структурой и мелким размером частиц в этом глинистом минерале позволяют широко применять его в промышленности, охране окружающей среды и биомедицине, в том числе в качестве носителей, абсорбентов, удобрений, адгезивов, средств против слеживания и фармацевтических препаратов. Помимо этих применений, ПАЛ был включен в состав кормов для жвачных. Пищевые добавки с ПАЛ могут улучшить физические качества гранулированного корма, показатели роста, питательные вещества, перевариваемость, иммунитет, антиоксидантный статус, барьерную функцию слизистой оболочки кишечника и целостность животных и проявляют противовоспалительные эффекты. Характеристики высокой поверхностной площади, высокой пористости и хорошей ионообменной способности глинистых минералов (например, монтмориллонита, цеолита и палыгорскита) позволяют изменять их с помощью физических и химических реакций для повышения их биологической активности [24].

Береговая Н. Г. и соавт. (2018) исследовали влияние синтетического цеолита (NaX) в составе корма цыплят-бройлеров на антиоксидантный статус и неспецифическую резистентность организма птицы. В сыворотке крови птицы определяли бактерицидную активность, активность бета-лизина, содержание лизоцима. Установили, что воздействие цеолита на защитные реакции организма цыплят реализовывалось за счет повышения уровня сывороточного лизоцима, и как следствие, бактерицидной активности сыворотки крови. Уровень бактерицидной активности сыворотки крови цыплят с цеолитной добавкой в рационе был выше относительно контроля на 1.8-1.9%, содержание лизоцима – на 3.6-4.1% [3].

Elwy A. Ashour et all (2025) изучали влияние различных доз нано-цинка (ZnNP), нано-селена (SeNP) и нано-кремния (SiNP) на живую массу птицы, микробиоту кишечника, качество мяса, темпы роста и показатели крови у бройлеров. Результаты показали, что введение SeNP, ZnNP и SiNP птицам значительно снижает уровень липопротеинов низкой плотности, брюшного жира и холестерина, влияет на содержание трийодтиронина и тироксина в крови, а также на уровни IgA и IgG и повышает уровень липопротеинов высокой плотности. В итоге улучшилась продуктивность бройлеров, некоторые характеристики качества мяса, а также снизилась микробная нагрузка в кишечнике [20].

Органические кислоты предлагаются как перспективные заменители антибиотиков, усиливающие также неспецифическую резистентность. Roshan Riaz et all (2025) рассмотрели эффективность органических кислот в экспериментальных моделях инфекций, включая некротический энтерит (Clostridium perfringens), кокцидиоз (Eimeria spp.), пуллороз (Salmonella spp.), кампилобактериоз (Campylobacter jejuni) и колибактериоз (Escherichia coli). В исследованиях, посвященных некротическому энтериту, добавление органических кислот уменьшало колонизацию C. perfringens и улучшало состояние кишечника. При исследовании кокцидиоза органические кислоты подавляли развитие эймерий. Предполагаемыми механизмами действия органических кислот авторы считают прямую про-тивомикробную активность, регулирование pH в желудочно-кишечном тракте и усиление иммунного ответа хозяина [25].

Кудрявцева Е. Н. и Борисенко К. В. (2011) установили, что введение в рацион птицы витаминно-минеральной добавки «Сел-плекс» способствует повышению таких гуморальных неспецифических факторов защиты, как лизоцимная и бактерицидная активность сыворотки крови цыплят [11].

Егоров И. А. и соавт. (2023) определили эффективность применения в комбикормах двух ферментных препаратов, обладающих высокой мурамидазной активностью, полученных с помощью штаммов Penicillium verruculosum – продуцентов гомологичной мурамидазы, а также Aspergillus oryzae – продуцента гетерологичной мурамидазы. Цыплята опытной группы по бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови превышали аналогов из контроля на 5,87 и 5,37% соответственно. Абсолютная и относительная масса селезенки, тимуса и фабрициевой сумки у цыплят всех групп находились в пределах физиологической нормы для 35-суточного возраста и не зависели от ввода в комбикорма мурамидазы [13].

Дашкина А. Р. и соавт. (2022) оценили действие продукта – смесь микробных масел, содержащая арахидоновую кислоту, при включении ее в количестве 0,1% от массы рациона цыплят-бройлеров. Определяли содержание лизоцима в сыворотке крови птицы на откорме и бактерицидную активность сыворотки крови. Исследуемая кормовая добавка достоверно стимулировала активность лизоцима сыворотки крови на 22-25%. Установлено увеличение доли макрофагов и тучных клеток на 10-12%. Результаты проведенных исследований свидетельствуют о стимуляции анаболических и иммунных реакций в организме птицы за счет применения кормовой добавки [6].

Дорожкин В. И. и соавт. (2020) изучали действие иммуномодуляторов гетмика и циклоферона на организм цыплят-бройлеров при колибактериозе. Установлено, что у цыплят опытных групп была выше сохранность (на 3,3-6,7%) и среднесуточный прирост живой массы (на 5,9-9,5%), что, по мнению авторов, связано с повышением показателей естественной резистентности: фагоцитарной активности псевдоэозинофилов (на 16,6-20,4%), а также бактерицидной активности плазмы крови (на 20,2 и 21,5%), что позволяет рекомендовать применение иммуномодуляторов в схеме лечения цыплят при бактериозах [7].

Wojciech Smulek et all (2022) исследовали возможность сапонинов усиливать антибактериальную активность нитрофурантоина в отношении грамотрицательных бактерий. Для увеличения транспорта нитрофурантоина в бактериальные клетки предложена стратегия с использованием природных поверхностно-активных веществ, выделенных из Sapindus mukorossi (мыльный орех). Результаты показали значительное увеличение общей проницаемости клеточной мембраны бактерий, что указывает на возможность использования новых биоразлагаемых поверхностно-активных веществ, то есть сапонинов, в антибактериальной терапии [28].

Кильметова И. Р. и Струнин Б. П. (2019) изучали возможность использования поверхностно-активных соединений для ветеринарии. Представителем группы катионных поверхностно-активных веществ является полигексаметиленгуанидин гидрохлорид (Роксацин-М). В ходе эксперимента установлен широкий спектр антибактериальной и фунгицидной активности Роксацина-М [9].

Известны факты усиления иммунного ответа и стимуляции фагоцитоза при назначении птице антибактериальных средств, в том числе антибиотиков, к примеру, макролидов (Касьяненко Е. Ф., 2019) [8].

В СКЗНИВИ в течение ряда лет ведутся работы по созданию новых антиинфекционных соединений неантибиотического происхождения [4, 7, 17, 18]. В качестве альтернативных средств предлагаются поверхностно-активные вещества (ПАВ) [14, 15], в их числе амиды жирных кислот [1, 2, 16] и производные эпоксидированного соевого масла (ЭПСМ). Святогорова А.Е. и соавт. (2025) установили, что добавление ПАВ 726 (водный раствор хлористоводородной соли 3-диметиламинопропиламида амида миристиновой кислоты) в рацион повышают сохранность птицы и прирост живой массы, что может свидетельствовать о положительном влиянии новых ПАВ на резистентность цыплят раннего возраста [5].

Неспецифическая защита организма животных обеспечивается клеточными и гуморальными факторами. К числу гуморальных факторов относится бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК). Целью нашего исследования было определение уровня БАСК цыплят-бройлеров при длительной выпойке им водных растворов новых поверхностно-активных веществ.

Материалы и методы исследования. Схемой нашего эксперимента было предусмотрено формирование четырёх групп цыплят: первая опытная (ОП-1) получала вместо воды 0,01% водный раствор ПАВ 29 (производное ЭПСМ); вторая опытная (ОП-2) получала вместо воды 0,01 % водный раствор ПАВ 726 (амид миристиновой кислоты в виде гидрохлорида). Первая контрольная группа (К-1) и вторая контрольная группа (К-2) получали воду в свободном доступе из ниппельных поилок. Кормление во всех группах было идентичным: с первого дня жизни цыплята получали полнорационный гранулированный комбикорм «Старт» для бройлеров 0-2 недель, а с третьей недели полнорационный гранулированный комбикорм «Рост» производителя «Южная корона» для бройлеров 3-4 недель. Спустя 7 дней животным опытных групп прекратили давать растворы ПАВ. В этот период цыплятам всех групп давали воду, рацион кормления был прежним и одинаковым. Через 7 дней животным опытных групп возобновили выпойку растворов ПАВ 726 и ПАВ 29 и продолжали 7 дней. Контрольные цыплята продолжали получать воду.

По окончании второго цикла в 7 дней определили сохранность цыплят в группах, взяли кровь из подкрыльцовой вены по 5 мл для определения БАСК.

Бактерицидную активность сыворотки крови определяли чашечным способом по методу Матусевича В.Ф. (1964), модифицированным Малёвым А.А. (2009) [12].

Результаты исследований и их обсуждение. В период выпаивания растворов ПАВ 726 и ПАВ 29 общее состояние цыплят оценили как удовлетворительное, нарушения аппетита не отметили, дисфункции кишечника не наблюдали, общей токсической реакции не наблюдали, живая масса цыплят во всех группах была близка равной.

Таблица 1 Влияние ПАВ на величину бактерицидной активности сыворотки крови и сохранность цыплят

Группа цыплят	Кол-во голов	Рацион	БАСК, %	Сохран­ность
				%	%
ОП-1	12	Основной рацион + ПАВ 29	22,4±0,18	12	100
К-1	13	Основной рацион + вода	20,3±0,20	10	92,3
ОП-2	12	Основной рацион + ПАВ 726	24,9±0,22	12	100
К-2	13	Основной рацион + вода	21,5±0,19	9	84,6

Результаты, приведённые в таблице 1 показывают, что введение в рацион цыплят водного раствора амида миристиновой кислоты (ПАВ 726) и водного раствора производного эпоксидированного соевого масла (ПАВ 29) повышает сохранность поголовья цыплят в опытных группах. Бактерицидная активность сыворотки крови цыплят опытных групп незначительно выше, чем в контрольных группах: при выпойке ПАВ 29 на 2,1 %; при выпойке ПАВ 726 на 3,4 %, что не является статистически достоверными (Р < 0,95). Это означает, что новые ПАВ не оказывают существенного влияния на уровень бактерицидной активности сыворотки крови цыплят.

Предполагаем, что основным механизмом действия новых ПАВ является прямая противомикробная активность. Раннее мы установили методом серийных разведений, что активность ПАВ 726 в отношении референтных и полевых изолятов E. coli и St. aureus составляет 6-12 мкг/мл; активность ПАВ 29 в отношении референтных и полевых изолятов St. aureus составляет 0,156-0,039 %, а в отношении E. coli составляет 0,0024-0,039 %. Наш опыт показал взаимосвязь между приемом новых ПАВ, обладающих высокой антимикробной активностью и сохранностью цыплят раннего возраста.

Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 24-26-00084 «Исследование механизма влияния катионных и амфотерных поверхностно-активных веществ на эпителиальный слой слизистой оболочки органов животных и разработка научно обоснованных подходов к созданию заменяющих антибиотики препаратов для лечения заболеваний желудочно-кишечного тракта и органов воспроизводства».

Список литературы:

1. Святогорова А. Е., Зубенко А. А., Фетисов Л. Н., Стрельников Б. А. Амиды жирных кислот – поверхностно-активные вещества с широким спектром биологической активности. Ветеринария Северного Кавказа. 2025; (10): 365-380.

2. Фетисов Л. Н., Зубенко А. А., Святогорова А. Е., Стрельников Б. А. Антимикробная активность новых поверхностно-активных веществ ряда амидов жирных кислот in vitro и in vivo. Ветеринария Северного Кавказа. 2025; (10): 417-430.

3. Береговая Н. Г., Герасименко В. В. Влияние цеолита типа Nax на антиоксидантный статус и неспецифическую резистентность организма. Вестник Воронежского государственного университета. 2018; (1): 41-52.

4. Бовкунова А. А., Бажина Е. С., Шмелев М. А. [и др.] Влияние координации 1,2,4-триазольного фрагмента в соединениях Cu(II) и Zn(II) с 2-{[(4H-1,2,4-триазол-4-ил)имино]метил}фенолом на их противомикробную активность. Известия Академии наук. Серия химическая. 2025; (74 (4): 986-1000.

5. Святогорова А. Е., Зубенко А. А., Фетисов Л. Н. [и др.] Влияние 3-ди-метиламинопропиламида миристиновой кислоты на микробиом кишечника цыплят. Ветеринария и кормление. 2025; (1): 63-67.

6. Дашкина А. Р., Клычкова М. В., Ильина Г. В. Влияние продукта, богатого арахидоновой кислотой, на содержание лизоцима и антибактериальную активность сыворотки сельскохозяйственной птицы. Вклад молодых ученых в инновационное развитие АПК России. Пензенский государственный аграрный университет. 2022: 44-47.

7. Дорожкин В. И., Горбач А. А., Резниченко А. А. Альтернативы антибиотикам при лечении колибактериоза в бройлерном птицеводстве. Птицеводство. 2020; (5-6): 70-74.

8. Касьяненко Е. Ф. Физиолого-биохимический состав крови и уровень естественной резистентности цыплят на фоне применения тилозиновых антибиотиков. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2019; (10-2): 318-322.

9. Кильметова И. Р., Струнин Б. П. Бактерицидные и фунгицидные свойства Роксацина-М. Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2019; (8 (2): 166-171.

10. Матюхина А. К., Зорина-Тихонова Е. Н., Гоголева Н. В. [и др.]. Комплексы Fe(III), Co(III) и Cu(II) с ацилгидразонами, содержащими трифенилфосфониевый фрагмент: синтез, кристаллическая структура и антибактериальная активность. Координационная химия. 2025; (51 (6): 387-399.

11. Кудрявцева Е. Н., Борисенко К. В. Естественная иммунобиологическая реактивность цыплят-бройлеров кросса росс-308 при введении в рацион препарата «Селплекс». Ученые записки учреждения образования Витебская ордена Знак почета государственная академия ветеринарной медицины. 2011; (47 (1): 191-194.

12. Малев А. А. Бактерицидная активность сыворотки крови различных видов животных, её диагностическая значимость. 2009: 23 с.

13. Егоров И. А., Егорова Т. В., Рожкова А. М. [и др.] Применение мурамидазы (лизоцима) в комбикормах для цыплят-бройлеров. Птицеводство. 2023; (3): 21-26.

14. Святогорова А. Е., Фетисов Л. Н., Зубенко А. А., Святогоров Н. А. Про-тистоцидная активность катионных ПАВ и известных антипротозойных препаратов. Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2024; (13 (1): 306-309.

15. Зубенко А. А., Сазонова Е. А., Авраменко М. В. [и др.]. Сравнительная антибактериальная активность новых поверхностно активных веществ и известных антибиотиков в отношении полевых изолятов и референтного штамма Escherichia coli. Ветеринария Кубани. 2024; (3): 19-22.

16. Чекрышева В. В., Фетисов Л. Н., Святогорова А. Е., Кононенко К. Н. Токсичность катионо-активного соединения амида миристиновой кислоты для аквариумных рыб. Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: Наука и высшее профессиональное образование. 2021; (3 (63): 254-262.

17. Zubenko A. A. et al. A new method for constructing pyrido[3’,2’:4,5] imidazo[1,2-b]pyridazine system and preparation of its derivatives. Mendeleev Communications. 2025; (35 (1): 24-26.

18. Ermakova E. A. et al. Bioactive mixed-ligand zinc(II) complexes with 1H-tetrazole-5-acetic acid and oligopyridine derivatives. Polyhedron. 2023; (230): 116213.

19. Chenglong Yu. et al. Therapeutic effect of a self-made herbal formula on a multi-drug resistant Eimeria tenella isolate infection in broiler chickens. Veterinary Parasitology. 2023; (324): 110057.

20. Elwy A. Ashour et al. Growth, carcass characteristics, meat quality, blood indices and gut microbiota of broiler chickens fed diets enriched with a combination of organic Zn, Se and Si nanoparticles. Journal of Applied Poultry Research. 2025: 100552.

21. Mahmoud Arisha et al. Consequences of dietary red pepper and radish oils’ supplementation on growth, carcass traits, blood indices, digestive enzymes activity and intestinal microbial load of broilers. Journal of Applied Poultry Research. 2024; (33 (4): 100498.

22. Marcela Faldynova et al. Feed supplementation with a mixture of C1 to C12 monoacylglycerides increases chicken resistance to Salmonella Enteritidis infection. Poultry Science. 2025; (104 (7): 105244.

23. Monika Pipova et al. Effect of feed supplementation with humic substances on phenotypic resistance profiles of Escherichia coli isolates from the ceca of broiler chickens. Poultry Science. 2025; (104 (7): 10517.

24. Pingping Zha et al. Dietary palygorskite-based antibacterial agent supplementation as an alternative to antibiotic improves growth performance, intestinal mucosal barrier function, and immunity in broiler chickens. Poultry Science. 2022; (101 (5): 101640.

25. Roshan Riaz et al. Response of different infection models in broiler chickens against supplemental Organic acid – A review. Microbial Pathogenesis. 2025; (204): 107527.

26. Salma E. Deeb et al. Impacts of dietary different levels of thyme leave powder as a natural growth promoter on growth performance, carcass characteristics, and blood indices of broilers. Poultry Science. 2024; (103 (12): 104396.

27. Tana He et al. Ligilactobacillus salivarius XP132 with antibacterial and immunomodulatory activities inhibits horizontal and vertical transmission of Salmonella Pullorum in chickens. Poultry Science. 2024; (103 (10): 104086.

28. Wojciech Smulek et al. Co-interaction of nitrofurantoin and saponins surfactants with biomembrane leads to an increase in antibiotic’s antibacterial activity. Journal of Molecular Liquids. 2022; (364): 120070.

Сведения об авторах:

Зубенко Александр Александрович, доктор биологических наук, главный научный сотрудник творческого коллектива по химическому синтезу новых лекарственных соединений Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный Ростовский аграрный научный центр»; 346421, Ростовская область, г. Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0; тел.: 8-928-6049743; e-mail: alexsandrzubenko@yandex.ru.

Фетисов Леонид Николаевич, кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник творческого коллектива по химическому синтезу новых лекарственных соединений Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный Ростовский аграрный научный центр»; 346421, Ростовская область, г. Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0; тел.: 8-908-1978224; e-mail: fetisoff.leonid2018@yandex.ru.

Яровая Наталья Александровна, лаборант-исследователь творческого коллектив по изучению инфекционной патологии животных Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный Ростовский аграрный научный центр»; 346421, Ростовская область, г. Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0; тел.: 8-999-2340481; e-mail: tkhim.sintez@yandex.ru.

Байрамова Виолетта Николаевна, лаборант-исследователь творческого коллектива по химическому синтезу новых лекарственных соединений Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный Ростовский аграрный научный центр»; 346421, Ростовская область, г. Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0; тел.: 8-938-4043648 ; e-mail: tkhim.sintez@yandex.ru.

Ответственный за переписку с редакцией: Святогорова Александра Евгеньевна, кандидат сельскохозяйственных наук, ведущий научный сотрудник творческого коллектива по химическому синтезу новых лекарственных соединений, ученый секретарь Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского ветеринарного института – филиала ФГБНУ «Федеральный Ростовский аграрный научный центр»; 346421, Ростовская область, г. Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0; тел.: +7-988-9525755; e-mail: sviatogorova.a@yandex.ru.

Заявленный вклад авторов: рукопись была написана благодаря вкладу всех авторов. Все авторы одобрили окончательную версию рукописи.

Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

	Полезные ссылки
Департамент ветеринарии Краснодарского края Ассоциация Практикующих Ветеринарных Врачей