![](img/p.gif) |
УДК: 619:616-006.44 DOI 10.33861/2071-8020-2022-4-4-6 Староселов М.А. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Краснодарский научный центр по зоотехнии и ветеринарии», г. Краснодар В последние годы резко изменились условия ведения молочного скотоводства: на фоне интенсификации производства создаются крупные молочно-товарные комплексы, ввозятся из-за рубежа высокопродуктивные животные. Интенсивность нагрузки на организм резко возрастает. В связи с этим все чаще регистрируются болезни продуктивных животных, которые сопровождаются снижением показателей иммунитета. Следует отметить, что причины снижения резистентности могут крыться в нарушении технологии кормления и условий содержания животных [1, 6], а также при специфических причинах [3, 5], и, как следствие, вторичных иммунодефицитов. Многие заболевания (диспепсия, эндометрит, бронхопневмония) развиваются на фоне вирусных и микробных патогенов, которые понижают показатели иммунитета (вирусной диареи-болезни слизистых, герпесвирус, парамиксовирус и другие) [4]. На Кубани, в других регионах Российской Федерации, как и в зарубежных странах с развитым животноводством широко распространены острые вирусные болезни органов дыхания и пищеварения крупного рогатого скота, часто приводящие к вспышкам, наносящим существенный экономический ущерб. Болезни органов дыхания молодняка крупного рогатого скота различного генеза, развиваются, как правило, на фоне развития иммунодефицитных состояний [2]. Для профилактики острых респираторных вирусных инфекций крупного рогатого скота широко применяются вирусные вакцины, как инактивированные, так и аттенуированные. По нашим данным, эффективность иммунопрофилактики ОРВИ крупного рогатого скота редко превышает 70%, независимо от вида вакцины. При изучении напряженности поствакцинального иммунитета при ОРВИ у 20-25% животных выявлен его дефицит. В свете сказанного выше, значение коррекции иммунитета при терапии и профилактике болезней сельскохозяйственных животных различного генеза, трудно переоценить [8]. С учетом всего изложенного важно постоянно вести поиск новых высокоэффективных иммуномодуляторов, повышающих иммунитет, устойчивость к стрессам, нормализующих обменные процессы, которые совмещали бы в себе доступность и безопасность. Поэтому определение эффективности иммунотропных препаратов при профилактике и терапии болезней органов дыхания крупного рогатого скота - является актуальной проблемой. Цель исследования - изучить влияние иммуномодуляторов Имак-тин и Иммунофан на иммунобиологические показатели у 3-месячных телят, больных бронхопневмонией. Материалы и методы исследований. Исследования проводили в лаборатории терапии Краснодарского НИВИ и на ТФ № 2 АО «Кубань» Усть-Лабинского района Краснодарского края. Комплексный гематологический анализ проведен на автоматизированном анализаторе «Mythic 18 vet» (Швейцария), скорость оседания эритроцитов (далее, СОЭ) - методом Панченкова; количественная оценка лимфоидных элементов - с помощью гематологического электронного цифрового счетчика, согласно методическим рекомендациям по ветеринарной гематологии [7]. Биохимические исследования -на автоматизированном биохимическом анализаторе «Vitalab SelectraJunior». Бактерицидную активность сыворотки крови - нефелометрическим методом по отношению к референтному штамму E. coli О55 в нашей модификации; лизоцимную активность сыворотки крови - нефелометрическим методом с M. lysodeiticus (ацетоновая культура); фагоцитарную активность нейтрофильных гранулоцитов периферической крови - с тест-культурой St. aureus 209р; оценку функциональной активности микробицидной системы нейтрофильных гранулоцитов - по спонтанному и стимулированному NBT-тесту, стимуляцию проводили тест-культурой St. aureus 209р; количество Т-лимфоцитов - методом спонтанного розеткообразования со стабилизированными эритроцитами барана; количество В-лимфоцитов -розеткообразованием с ЕАС-комплексом с использованием стабилизированных эритроцитов быка, основываясь на «Методических указаниях по тестированию естественной резистентности телят» (1980) и «Методах оценки функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов» (1992). Результаты исследований и их обсуждение. Для проведения исследований на следующем этапе работы на ТФ № 2 АО «Кубань» Усть-Лабинского района из 30 телочек голштинской породы в возрасте трех месяцев, больных острой серозно-катаральной бронхопневмонией, было сформировано 3 группы по 10 голов в каждой. До начала эксперимента у трех животных из каждой группы отобрали кровь для проведения лабораторных исследований. Животным первой группы, на фоне принятой в хозяйстве схемы терапии вводили Имактин в дозе 0,15 мг/кг массы тела в виде 3% водного раствора, однократно, через 24 часа, трижды. Животным второй опытной группы по аналогичной схеме вводили Иммунофан в дозе 1,0 мл. Животным третьей, контрольной группы иммуностимуляторы не применяли. Животным первой, второй и контрольной групп проводилась терапия, применяемая в хозяйстве: антибиотик Энрофлоксацин раствор 1 раз в сутки, в дозировке 2,5 мг/1 кг 5 дней подряд; Элео-вит, однократно, в дозировке 5 см3/гол внутримышечно. Через 10 дней после последнего введения препаратов у всех телят опытных и контрольной групп отбирали кровь из яремной вены для проведения лабораторных исследований. При изучении гематологических показателей у телят 3-месячного возраста, при применении иммуномодуляторов, установили, что в группе, где применялась терапия с включением в нее иммуномодулятора Имактин, эритроциты увеличились на 28%, тогда как в группе с препаратом Иммунофан увеличились на 12% и составили 9,8*1012/л и 8,7*1012/л, соответственно. Уровень гемоглобина в группах, где применялись иммуномодуляторы был выше контрольной группы на 17,6% и 19,2%, соответственно, по сравнению с контрольной группой. Было отмечено меньшее количество лейкоцитов в сравнении с контрольной группой, где данный показатель составлял 11,2*109/л - в группе с Иммунофаном -10,0*109/л и с Имактином - 10,5х109/л. Применение Имактина и Иммунофана нормализуют у больных бронхопневмонией телят количество лейкоцитов и сегметоядерных нейтрофилов, что свидетельствует о снижении воспалительной реакции, недостоверно повышается количество гемоглобина, повышается количество общего белка и нормализуется его фракционный состав; снижается ацидоз (табл. 1, 2). При исследовании - применении Имактина и Иммунофана у больных телят активизировалось фагоцитарное звено иммунитета, возросло количество Т-лимфоцитов и нормализовались ЦИК. Таблица 1 Влияние иммуностимулирующих препаратов на показатели крови 3-месячных телят, больных бронхопневмонией (M±m; n=10) Показатели | Единицы измерения | ФОН | 1 опытная — Имактин | 2 опытная — Иммунофан | Контроль | Эритроциты | 1012/л | 7,6±0,1 | 9,89±0,02 | 8,78±0,05 | 7,7±0,02 | Гемоглобин | г/л | 108±1,2 | 120,5±0,1 | 121,6±0,07 | 102,4±0,05 | Лейкоциты | 109/л | 13,0±5,2 | 10,5±0,1 | 10,05±0,1 | 11,28±0,05 | Лейкограмма Эозинофилы | % | 6,1±0,4 | 4,4±0,2 | 5,0±0,26 | 4,9±0,23 | Нейтрофилы: Юные | % | 0,6±0,24 | 0,8±0,1 | 0,7±0,2 | 0,8±0,2 | палочкоядерные | % | 3,6±0,2 | 3,4±0,4 | 4,5±0,34 | 3,3±0,37 | сегментоядерные | % | 34,9±0,9 | 28,9±0,53 | 29,1±0,53 | 33,7±0,4 | Лимфоциты | % | 57,1±0,9 | 62,9±0,39 | 64,0±0,45 | 60,4±0,4 | Моноциты | % | 3,8±0,2 | 4,0±0,21 | 1,7±0,21 | 1,7±0,25 | Общий белок | г/л | 67,0±0,9 | 79,1±0,1 | 78,1±1,8 | 69,1±2,6 | Белковые фракции: альбулины | % | 38,4±0,4 | 43,1±1,2 | 40,0±2,8 | 37,8±2,5 | а-глобулины | % | 17,3±1,0 | 13,3±0,8 | 16,8±0,7 | 14,1±1,8 | в-глобулины | % | 13,8±0,7 | 14,1±1,6 | 12,2±1,2 | 23,5±3,6 | Y-глобулины | % | 30,5±0,8 | 29,5±1,6 | 31,0±2,4 | 24,6±1,5 | Общий Са | ммоль/л | 2,6±0,2 | 3,31±0,05 | 3,017±0,05 | 3,07±0,05 | Неорганический Р | ммоль/л | 2,3±0,05 | 2,32±0,029 | 2,14±0,03 | 1,98±0,02 | Резервная щелочность | Об%СО2 | 41,6±112 | 52,55±1,0 | 50,55±2,1 | 48,55±0,9 | Таблица 2 Влияние иммуностимулирующих препаратов на показатели крови 3-месячных телят, больных бронхопневмонией (M±m; n=10) Показатели | Фон | Имактин | Иммунофан | Контроль | IgA г/л | 1,28±0,3 | 0,9±0,15 | 1,14±0,24 | 0,04±0,01 | IgM г/л | 1,75±0,65 | 1,03±0,13 | 0,86±0,15 | 1,06±0,24 | IgG г/л | 17,0±3,7 | 23,05±2,7 | 21,98±3,0 | 17,4±4,32 | ЦИК | 76,8±15,1 | 66,6±1,6 | 63,0±3,7 | 68,0±7,2 | ФА% | 44,0±1,2 | 62,6±1,3 | 66,6±3,7 | 38,6±0,6 | ФЧ, ед | 0,9±0,2 | 1,4±0,1 | 1,3±0,2 | 1,3±0 | ЗФ | 0,81±0,1 | 1,1±0,08 | 1,2±0,1 | 1,0±0 | Т, % | 58,2±3,1 | 64,0±2,0 | 63,6±2,0 | 56,3±2,3 | В, % | 30,2±2,8 | 27,3±0,6 | 30,0±2,0 | 27,6±2,1 | Т, 109/л | 2,3±0,2 | 3,9±1,3 | 2,0±0,5 | 2,8±0,3 | В, 109/л | 1,19±0,34 | 1,7±0,6 | 0,9±0,2 | 1,2±0,2 | Т-л% / В-л% | 1,92±0,1 | 2,3±0,1 | 2,1±0,1 | 2,4±0,2 | Фарм. Поз. NBT сп. % | 30,1±2,6 | 33,3±4,6 | 31,3±3,4 | 29±3,7 | Фарм. Поз. NBT ст. % | 38,2±3,7 | 42±3 | 40,3±1,8 | 45,6±0,8 | СЦИсп. | 0,3±0 | 0,3±0 | 0,3±0 | 0,3±0 | СЦИст. | 0,3±0 | 0,4±0 | 0,4±0 | 0,5±0 | КМ, ед. | 2,6±0,3 | 0,8±0,1 | 2,1±0,4 | 3,0±0,5 | ЛАСК, ед./мл. | 42,2±4,7 | 70,28±4,6 | 68,5±23,0 | 41,1±21,2 | БАСК, % | 30,1±21,9 | 62,1±15,4 | 51,8±8,9 | 36,46±5,1 | Под воздействием иммуностимуляторов в крови повышается количество иммуноглобулина G (рисунок 1), однако, поскольку гуморальный иммунитет не оказывает существенного влияния на развитие болезней органов дыхания, мы провели параллельно исследование влияния иммуностимуляторов на показатели секреторных антител. ![](_pictures/2022/04/ris-01.jpg) Рис. 1. Влияние иммуностимулирующих препаратов на показатели крови 3-месячных телят, больных бронхопневмонией ![](_pictures/2022/04/ris-02.jpg) Рис. 2. Влияние иммуномодуляторов на Ig A у телят 3-месячного возраста, больных острой серозно-катаральной бронхопневмонией, г/л ![](_pictures/2022/04/ris-03.jpg) Рис. 3. Влияние иммуномодуляторов на Ig G у телят 3-месячного возраста, больных острой серозно-катаральной бронхопневмонией, г/л Как видно из данных рисунков 2 и 3, Иммунофан значительно повышает количество IgA в сыворотке крови и носовых секретах: в сыворотке увеличение от 0,04 г/л до 1,14 г/л, что в 28 раз выше, тогда как в носовых секретах это увеличение составило в 5,8 раз от 0,09 г/л до 0,53 г/л. Что касается IgG, то у животных, где применялся Иммунофан по сравнению с контрольной группой, в сыворотке крови увеличение составило 25%, с 17,4 г/л до 21,9 г/л, а в носовых секретах на 21% с 6,6 г/л до 8 г/л. В сыворотке крови телят опытной группы, в которой применялся Имактин, было отмечено увеличение содержания иммуноглобулинов: IgA до 0,96 г/л (контрольная группа 0,04 г/л) и IgG до 23 г/л, в сравнении с контролем, где этот уровень составлял 17,4 г/л. В носовых секретах телят уровень IgG составил 10,6 г/л, тогда как в контрольной группе данный показатель был на уровне 6,6 г/л. IgA был на уровне 0,65 г/л, что в 7,2 раза выше, чем в контроле. Содержание IgM было без видимых изменений и колебалось в среднем по группам в сыворотке крови от 0,86 г/л до 1,06 г/л; в носовых секретах от 0 до 0,03 г/л. Заключение. Показатели гуморального звена иммунитета (ли-зоцимная активность сыворотки крови) у больных телят были ниже, чем у здоровых в обеих возрастных группах, соответственно, на 3,5 и 45,5%, а БАСК снижена только у телят старшего возраста на 50%, установлен дефицит звена фагоцитоза, при этом количество иммуноглобулинов в сыворотке крови существенно не изменилось. Поскольку основными показателями, влияющими на развитие респираторной патологии у телят является снижение активности системы фагоцитоза и клеточного звена иммунитета как общего, так и системного, при этом активность гуморального звена существенного влияния на развитие патологии органов дыхания не оказывает, наиболее доступными для нормализации показателей иммунитета, влияющие на развитие и тяжесть течения респираторных болезней у молодняка крупного рогатого скота являются Имактин и Иммунофан. Имактин и Иммунофан при использовании в схеме терапии бронхопневмонии повышают показатели фагоцитоза, снижают воспалительную реакцию и активизируют выработку секреторных антител респираторного тракта. Список литературы: 1. Бузлама В.С. Экологический фактор// Предложения ученых по профилактике желудочно-кишечных болезней телят до месячного возраста: материалы круглого стола отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии. 2000. С. 25-27. 2. Влияние пребиотика Баскин-вет на микробиоценоз кишечника новорожденных телят/ М.А. Старосёлов, Н.Ю. Басова, А.К. Схатум, Ю.Е. Фёдоров, В.В. Пачина, А.Н. Марков// Российский журнал. Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2016. № 1 (17). С. 72-75. 3. Дементьева М.С., Крысенко Ю.Г., Иванов И.С. Изучение показателей крови телят при применении вакцины «Клостбовак-8» в сочетании с иммуномодулятором// Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2021. Т. 248. № 4. С. 58-61. 4. Иммунобиотехнологический подход к регуляции репродуктивной функции, обмена веществ и продуктивности животных/ В.А. Галочкин, Л.К. Эрнст, Л.И. Триндо и др.// Сельскохозяйственная биология. 1994. № 2. С. 3-19. 5. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота/ А.Г. Глотов, А.Ф. Шу-ляк, Т.И. Глотова, А.Н. Сергеев// 2006. 194 с. 6. Повышение устойчивости телят к смешанным вирусно-бактериальным респираторным инфекциям/ П. Сисягин, Е. Сисягина, Г. Реджепова, И. Убити-на// Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2015. № 12. С. 23-28. 7. Староселов М.А. Оценка сравнительной эффективности иммунокорректоров для повышения резистентности крупного рогатого скота: дисс. на соиск. уч. степ.канд.вет.наук// КубГАУ. 2008. 8. Федоров Ю.Н. Иммунологический фактор как причина желудочно-кишечных заболеваний у телят// Предложения ученых по профилактике желудочнокишечных болезней телят до месячного возраста: материалы круглого стола отделения ветеринарной медицины Россельхозакадемии. 2000. С. 36-37. Резюме. Для коррекции иммунитета при профилактике и терапии вирусных инфекций респираторного тракта молодняка крупного рогатого скота применяются иммунокорректоры различных фармакологических групп. При использовании иммунокорректоров следует учитывать состояние системы иммунитета у животных разного возраста: у новорожденных и молодых телят до 2-месячного возраста низкая функциональная активность иммунной системы, защита организма осуществляется по гуморальному звену (колостральный иммунитет) и системе фагоцитоза. В старшем возрасте увеличивается зрелость иммунной системы, для осуществления защиты подключается клеточное звено, животное способно активно реагировать на вирусные и бактериальные антигены. Изучено влияние двух иммунокорректоров, обладающих широким спектром действия -Имактин и Имунофан - на иммунобиологические показатели у телят трехмесячного возраста, больных бронхопневмонией при использовании наряду с традиционной схемой лечения. Препараты у больных бронхопневмонией телят нормализуют количество лейкоцитов и сегментоядерных нейтрофилов, что свидетельствует о снижении воспалительной реакции, недостоверно повышается количество гемоглобина, повышается количество общего белка и нормализуется его фракционный состав; снижается ацидоз. Под воздействием иммуностимуляторов значительно повышается в крови количество иммуноглобулинов класса G и A. Имактин и Иммунофан при использовании в схеме терапии бронхопневмонии повышают показатели фагоцитоза, снижают воспалительную реакцию и активизируют выработку секреторных антител респираторного тракта. Ключевые слова: крупный рогатый скот, иммунитет, профилактика, гематологическая реакция, иммунология, иммунобиологический показатель, иммунокорректор, Иммунофан, Имактин. Сведения об авторе: Староселов Михаил Александрович, кандидат ветеринарных наук, заведующий отделом терапии и акушерства ФГБНУ «Научный центр по зоотехнии и ветеринарии»; г. Краснодар, ул. 1-я линия, 1; тел.: 8-953-1122803; e-mail: knivitherapy@gmail.com - ответственный за переписку с редакцией.
|
![](img/p.gif) |